해조류로부터의 생리활성물질을 이용한 기능성 식품소재 개발 / 해양수산부 ; 고려대학교 ; (주)...
소장정보
| 서가번호 | 등록번호 | 청구기호 | 소장처 | 대출가능여부 | 대출정보 | |
|---|---|---|---|---|---|---|
| 0003989 | 574.93 해62ㅎ | 농림축산식품부 자료실 | 대출가능 |
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008120105s2000 ulka t AC 000a korIA
056 ▼a574.93▼24
090 ▼a574.93▼b해62ㅎ
110 ▼a해양수산부
24500▼a해조류로부터의 생리활성물질을 이용한 기능성 식품소재 개발▼d해양수산부▼e고려대학교▼e(주)지엠에프 [공편]
260 ▼a[서울]▼b고려대학교▼c2000
300 ▼axxⅲ, 192 p.▼b삽도▼c30 cm
44000▼a최종연구보고서
50000▼a연구책임자 : 양한철
7001 ▼a양한철
710 ▼a고려대학교
710 ▼a지엠에프
710 ▼a농림수산식품부
710 ▼a농림축산식품부
9501 ▼a비매품
제1장 서론 = 1
제1절 연구개발의 목적과 범위 = 1
제2절 기술적인 측면에서의 연구개발 필요성 = 1
제3절 경제 · 산업적 측면에서의 필요성 = 5
제4절 사회 · 문화적 측면에서의 필요성 = 6
제2장 해조류 함유 macrophage 활성화 물질의 기능성식품 소재화 = 8
제1절 서설 = 8
제1항 재료 = 12
제2항 실험방법 = 12
1. Macrophage 활성화 물질의 검색 시료 제조 = 12
2. 돌김으로부터 Macrophage 활성화 물질의 추출 및 정제 = 13
3. Macrophage 활성화 물질의 특성 = 16
4. 구성당 분석 = 17
5. Macrophage 활성화 물질의 항종양 활성 측정 = 17
6. In vitro 상에서의 면역활성 측정 = 19
7. 돌김 함유 macrophage 활성화 물질의 공업적 추출방법 = 20
8. 돌김 함유 macrophage 활성화 물질의 공업적 수준에서의 분리 및 정제 = 20
9. 경질캡슐제 제작 및 안정성 검사 = 21
제3절 결과 = 21
제1항 해조류로부터 macrophage 활성화 물질의 검색 = 21
제2항 돌김으로부터 macrophage 활성화 물질의 추출 = 25
1. 추출 용매의 영향 = 25
2. 돌김으로부터 macrophage 활성화 물질의 대량 추출 = 27
제3항 Macrophage 활성화 물질 본체의 검토 = 27
제4항 Macrophage 활성화 다당의 정제 = 28
1. Ion exchange chromatography에 의한 분획 = 28
2. Gel permeation chromatography(GPC)에 의한 분획 = 31
3. 정제 다당의 순도 확인 = 31
4. 정제 다당의 분자량 확인 = 34
제5항 Macrophage 활성화 물질 PS-Ⅰ의 항종양 활성 = 34
1. Sarcoma-180 cell에 대한 PS-Ⅰ의 항종양 활성 = 34
2. Sarcoma-180 cel에 대한 직접적 세포독성 = 36
3. 마우스 대식세포 활성화에 미치는 PS-Ⅰ의 영향 = 37
4. 마우스 B 임파구 활성화에 미치는 PS-Ⅰ의 영향 = 38
제6항 In vitro 상에서의 면역활성 = 39
1. TNF-α(tumor necrosis factor-α) bioassay = 39
2. NO(nitric oxide)determination = 40
3. Phagocytosis assay = 41
제7항 돌김 함유 macrophage 활성화 물질의 기능성 식품화 = 43
1. 공업적 추출방법의 확립 = 43
2. 시작품 제작 및 안정성 검사 = 47
제3장 해조류 함유 항보체 활성물질의 기능성 식품 소재화 = 49
제1절 서설 = 49
제2절 재료 및 방법 = 51
제1항 재료 = 51
제2항 실험방법 = 51
1. 일반 성분분석 및 황산기 함량 분석 = 51
2. 구성당 분석 = 52
3. 항보체 활성 측정 = 52
4. 해조류부터 항보체 활성 검색 = 54
5. 항보체 물질의 추출 = 54
6. 참도박으로부터 항보체 활성물질의 추출 = 54
7. 참도박 열수 추출물로부터 항보체 활성물질의 정제 = 56
8. 정제다당류의 순도 및 HPLC분자량 측정 = 58
9. 항보체 활성 본체의 규명 = 58
10. 보체계 활성경로 및 용혈억제 양식 검토 = 58
11. 참도박 열수 추출물의 독성 실험 = 59
12. Sarcoma-180의 고형암 증식 저해실험 = 59
13. 면역기전에 관련된 장기 중량 변화 = 60
14. Sarcoma-180 cell에 대한 세포독성 측정 = 60
15. 참도박 함유 항보체 활성물질의 공업적 추출방법 = 61
16. 참도박 함유 항보체 활성물질의 공업적 수준에서의 분리 및 정제 = 61
17. 경질캡슐제 제작 및 안정성 검사 = 62
제3절 결과 = 62
제1항 해조류로부터 항보체 활성물질의 검색 = 62
제2항 참도박(Pachymeniopsis elliptica)으로부터 항보체 활성 물질의 추출 = 66
1. 추출 용매의 영향 = 66
2. 추출방법에 따른 다당류 항보체 활성 검색 = 68
제3항 참도박 열수 추출물의 항보체 활성과 구성성분 = 70
제4항 항보체 활성 다당의 정제 = 71
1. PE-1의 한외여과에 의한 분획 = 71
2. PE-1-C의 ion exchange chromatography에 의한 분획 = 73
3. PE-1-CIV의 Sepharose CL-6B에 의한 분획 = 74
4. PE-1-CIV-ii의 HPLC에 의한 순도 확인 = 74
제5항 항보체 활성의 본체 = 77
제6항 보체계 활성경로 및 용혈억제 양식의 검토 = 78
제7항 참도박 열수 추출물의 독성검사 = 79
1. 경구투여 급성독성 검사 = 79
2. 꼬리정맥투여 급성독성 검사 = 79
제8항 항보체 활성 물질의 마우스 꼬리정맥 주사시 장기무게변화 = 81
제9항 항보체 활성 물질의 고형암 중식저해 효과 = 83
제10항 항보체 활성 물질의 면역기전에 관련된 장기 중량변화 = 84
제11항 Sarcoma-180 cell에 대한 세포독성 측정 = 86
제12항 참도박 함유 항보체 활성 물질의 기능성 식품화 = 86
1. 공업적 추출방법의 확립 = 86
2. 시작품 제작 및 안정성 검사 = 90
제4장 해조류 함유 혈압조절 활성 물질의 기능성식품 소재화 = 91
제1절 서설 = 91
제2절 재료 및 방법 = 96
제1항 재료 = 96
제2항 실험방법 = 97
1. 일반 성분 분석 및 황산기 함량 분석 = 97
2. 구성당 분석 = 97
3. 항응고 활성 측정 = 98
4. 해조류로부터 항응고 활성 검색 = 98
5. 참도박(Pachymeniopsis elliptica)으로부터 항응고 물질의 추출조건 검토 = 98
가. 추출용매에 따른 항응고 활성 검토 = 98
나. 추출온도에 따른 항응고 활성 검토 = 98
다. 추출시간에 따른 항응고 활성 검토 = 100
6. 참도박으로부터 항응고 활성 물질의 추출 = 100
7. 참도박 열수 추출물로부터 항응고 활성 물질의 정제 = 100
가. 한외여과에 의한 분획 = 100
나. DEAE-Toyopearl 650C에 의한 ion exchange chromatography = 100
다. Sepharose CL-6B에 의한 gEl filtration chromatography = 100
8. 정제다당류의 순도 및 HPLC 분자량 측정 = 102
9. 적외선 흡수분광법(Infra-red spectroscopy) = 103
10. 참도박 열수 추출물의 in vivo 상에서의 항응고 활성 = 103
가. 급성독성(acute toxicity) 검사 = 103
나. 아만성 독성(subchronic toxicity) 실험 = 103
다. Thrombin에 대한 항치사성 효과 = 104
라. 생체 내에서의 항응고 효과 = 104
마. 생체 내에서의 잔존 효과 = 104
11. ACE 저해물질의 추출조건 검토 = 104
가. 산ㆍ알칼리 가수분해 = 104
나. 시간에 따른 산ㆍ알칼리 가수분해 = 105
다. 농도에 따른 산 가수분해 = 105
12. ACE 저해효과 측정 = 105
13. 단백질 정량 = 105
14. 김으로부터의 ACE 활성 저해물질의 분리 = 105
15. ACE 저해물질의 정제 = 106
가. Amberlite XAD 8 column에 의한 affinity chromatography = 106
나. DEAE-Toyopearl 650C column에 의한 ion exchange chromatography = 106
다. Sephadex LH-20 column에 의한 size exclusion chromatography = 106
라. Reverse phase HPLC에 의한 분리 = 106
마. High Performance Capillary Electrophoresis(HPCE) = 106
16. Protease처리에 대한 영향 = 108
17. 활성물질의 특성 = 108
가. 분자량 확인 = 108
나. ACE에 대한 저해 양상 = 108
다. 아미노산 분석 = 108
18. 본태성고혈압쥐에서의 혈압강하효과 = 109
가. 장내 소화효소에 대한 영향 = 109
나. Single oral administration = 110
다. Daily oral administration = 110
19. ACE activities of organs in SHR's = 110
가. Daily oral administration = 110
나. Serum에서의 ACE 추출 = 110
다. 각 조직에서의 ACE 추출 = 110
라. 각 조직에서 추출한 ACE 활성 측정 = 111
20. Hep-G2 cell에서의 항콜레스테롤 효과 = 111
가. Cell cultures = 111
나. Hep-G2 cell에서의 지질 추출 = 112
다. 트리글리세라이드 측정 = 112
라. 콜레스테롤 측정 = 112
21. 김 함유 ACE 활성 저해성분의 공업적 추출방법 = 113
22. 김 함유 ACE 활성 저해물질의 공업적 수준에서의 분리 및 정제 = 113
가. 탈색방법 = 113
나. 한외여과를 이용한 공업적 수준에서의 정제법 확립 = 113
다. 김 함유 ACE 활성 저해물질의 공업적 순도에서의 조제 = 113
23. 경질캡술제 제작 및 안정성 검사 = 113
제3절 결과 = 14
제1항 해조류로부터 항응고 활성물질의 검색 = 114
제2항 참도박(Pachymeniopsis elliptica)으로부터 항응고 활성 물질의 추출 = 117
1. 추출용매에 따른 항응고 활성 검색 = 117
2. 추출온도에 따른 항응고 활성 검색 = 118
3. 추출시간에 따른 항응고 활성 검색 = 119
4. 참도박으로부터 항응고성 물질의 대량추출과 에탄올 농도별 침전 = 120
제3항 참도박(Pachymeniopsis elliptica)으로부터 항응고 활성 물질의 분리 및 정제 = 122
1. PE-2의 ultrafiltration 분획에 의한 항응고 활성 = 122
2. PE-2-IV의 ion exchange chromatography에 의한 분획 = 123
3. PE-2-IVC의 Sepharose CL-6B에 의한 분획 = 124
4. PE-2-IVC-ii의 HPLC에 의한 분획1 = 124
제4항 정제 항응고 활성 다당의 순도 및 분자량 측정 = 129
1. 순도 확인 = 129
2. 정제 다당의 분자량 검토 = 130
3. 참도박으로부터 추출한 항응고성 물질의 특성 = 130
제5항 참도박에서 분리한 항응고성 다당류의 IR 흡수 특성 파악 = 131
제6항 참도박 PE-2의 mouse(in vivo)에서의 항응고 활성 = 133
1. 경구투여 급성 독성(acute toxicity) = 133
2. 꼬리정맥투여 급성 독성 = 133
3. 경구에 의한 아만성 독성(subchronic toxicity) = 134
4. Thrombin에 의한 항치사성 효과 = 135
5. 경구투여에 의한 생체 내에서의 항응고 효과 = 135
6. 꼬리정맥투여에 의한 생체 내에서의 항응고 효과 = 136
7. 생체내에서의 잔존효과 = 137
제7항 해조류로부터 ACE 저해활성 검색 = 138
제8항 산ㆍ알칼리 가수분해물의 ACE 저해활성 = 138
1. 산ㆍ알칼리 가수분해 = 138
2. 산ㆍ알칼리 가수분해에 대한 반응시간의 영향 = 138
3. 산 가수분해에 대한 농도의 영향 = 143
제9항 김 산가수분해물의 ACE 저해활성 = 143
제10항 ACE 활성 저해물질의 분리 및 정제 = 144
1. Amberlite XAD 8 column chromatography에 의한 분리 = 144
2. DEAE-Toyopearl 650C column chromatography에 의한 분리 = 145
3. Sephadex LH-20 column chromatography에 의한 분리 = 147
4. Analytical HPLC에 의한 분리 = 147
5. High Performance Capillary Electrophoresis (HPCE)에 의한 순도확인 = 147
제11항 ACE 활성 저해물질의 특성 = 150
1. 정제물질의 분자량 확인 = 150
2. ACE에 대한 저해 양상 = 150
3. 아미노산 분석 = 152
제12항 본태성 고혈압쥐로부터 혈압강하효과 = 152
1. 소화효소에 대한 영향 = 152
2. Single oral administration = 153
3. Daily oral administration = 154
4. ACE activity of the organs in SHR's = 154
제13항 ACE 저해제의 항콜레스테롤 효과 = 156
1. Cell viability = 156
2. ACE 저해제의 항콜레스테롤 효과 = 157
제14항 김 함유 ACE활성 저해물질의 기능성 식품화 = 158
1. 공업적 추출방법의 확립 = 158
2. 시작품 제작 및 안정성 검사 = 161
부록 = 162-1
1. 발표논문 = 162-1
2. 특허출원 = 182-1
제1절 연구개발의 목적과 범위 = 1
제2절 기술적인 측면에서의 연구개발 필요성 = 1
제3절 경제 · 산업적 측면에서의 필요성 = 5
제4절 사회 · 문화적 측면에서의 필요성 = 6
제2장 해조류 함유 macrophage 활성화 물질의 기능성식품 소재화 = 8
제1절 서설 = 8
제1항 재료 = 12
제2항 실험방법 = 12
1. Macrophage 활성화 물질의 검색 시료 제조 = 12
2. 돌김으로부터 Macrophage 활성화 물질의 추출 및 정제 = 13
3. Macrophage 활성화 물질의 특성 = 16
4. 구성당 분석 = 17
5. Macrophage 활성화 물질의 항종양 활성 측정 = 17
6. In vitro 상에서의 면역활성 측정 = 19
7. 돌김 함유 macrophage 활성화 물질의 공업적 추출방법 = 20
8. 돌김 함유 macrophage 활성화 물질의 공업적 수준에서의 분리 및 정제 = 20
9. 경질캡슐제 제작 및 안정성 검사 = 21
제3절 결과 = 21
제1항 해조류로부터 macrophage 활성화 물질의 검색 = 21
제2항 돌김으로부터 macrophage 활성화 물질의 추출 = 25
1. 추출 용매의 영향 = 25
2. 돌김으로부터 macrophage 활성화 물질의 대량 추출 = 27
제3항 Macrophage 활성화 물질 본체의 검토 = 27
제4항 Macrophage 활성화 다당의 정제 = 28
1. Ion exchange chromatography에 의한 분획 = 28
2. Gel permeation chromatography(GPC)에 의한 분획 = 31
3. 정제 다당의 순도 확인 = 31
4. 정제 다당의 분자량 확인 = 34
제5항 Macrophage 활성화 물질 PS-Ⅰ의 항종양 활성 = 34
1. Sarcoma-180 cell에 대한 PS-Ⅰ의 항종양 활성 = 34
2. Sarcoma-180 cel에 대한 직접적 세포독성 = 36
3. 마우스 대식세포 활성화에 미치는 PS-Ⅰ의 영향 = 37
4. 마우스 B 임파구 활성화에 미치는 PS-Ⅰ의 영향 = 38
제6항 In vitro 상에서의 면역활성 = 39
1. TNF-α(tumor necrosis factor-α) bioassay = 39
2. NO(nitric oxide)determination = 40
3. Phagocytosis assay = 41
제7항 돌김 함유 macrophage 활성화 물질의 기능성 식품화 = 43
1. 공업적 추출방법의 확립 = 43
2. 시작품 제작 및 안정성 검사 = 47
제3장 해조류 함유 항보체 활성물질의 기능성 식품 소재화 = 49
제1절 서설 = 49
제2절 재료 및 방법 = 51
제1항 재료 = 51
제2항 실험방법 = 51
1. 일반 성분분석 및 황산기 함량 분석 = 51
2. 구성당 분석 = 52
3. 항보체 활성 측정 = 52
4. 해조류부터 항보체 활성 검색 = 54
5. 항보체 물질의 추출 = 54
6. 참도박으로부터 항보체 활성물질의 추출 = 54
7. 참도박 열수 추출물로부터 항보체 활성물질의 정제 = 56
8. 정제다당류의 순도 및 HPLC분자량 측정 = 58
9. 항보체 활성 본체의 규명 = 58
10. 보체계 활성경로 및 용혈억제 양식 검토 = 58
11. 참도박 열수 추출물의 독성 실험 = 59
12. Sarcoma-180의 고형암 증식 저해실험 = 59
13. 면역기전에 관련된 장기 중량 변화 = 60
14. Sarcoma-180 cell에 대한 세포독성 측정 = 60
15. 참도박 함유 항보체 활성물질의 공업적 추출방법 = 61
16. 참도박 함유 항보체 활성물질의 공업적 수준에서의 분리 및 정제 = 61
17. 경질캡슐제 제작 및 안정성 검사 = 62
제3절 결과 = 62
제1항 해조류로부터 항보체 활성물질의 검색 = 62
제2항 참도박(Pachymeniopsis elliptica)으로부터 항보체 활성 물질의 추출 = 66
1. 추출 용매의 영향 = 66
2. 추출방법에 따른 다당류 항보체 활성 검색 = 68
제3항 참도박 열수 추출물의 항보체 활성과 구성성분 = 70
제4항 항보체 활성 다당의 정제 = 71
1. PE-1의 한외여과에 의한 분획 = 71
2. PE-1-C의 ion exchange chromatography에 의한 분획 = 73
3. PE-1-CIV의 Sepharose CL-6B에 의한 분획 = 74
4. PE-1-CIV-ii의 HPLC에 의한 순도 확인 = 74
제5항 항보체 활성의 본체 = 77
제6항 보체계 활성경로 및 용혈억제 양식의 검토 = 78
제7항 참도박 열수 추출물의 독성검사 = 79
1. 경구투여 급성독성 검사 = 79
2. 꼬리정맥투여 급성독성 검사 = 79
제8항 항보체 활성 물질의 마우스 꼬리정맥 주사시 장기무게변화 = 81
제9항 항보체 활성 물질의 고형암 중식저해 효과 = 83
제10항 항보체 활성 물질의 면역기전에 관련된 장기 중량변화 = 84
제11항 Sarcoma-180 cell에 대한 세포독성 측정 = 86
제12항 참도박 함유 항보체 활성 물질의 기능성 식품화 = 86
1. 공업적 추출방법의 확립 = 86
2. 시작품 제작 및 안정성 검사 = 90
제4장 해조류 함유 혈압조절 활성 물질의 기능성식품 소재화 = 91
제1절 서설 = 91
제2절 재료 및 방법 = 96
제1항 재료 = 96
제2항 실험방법 = 97
1. 일반 성분 분석 및 황산기 함량 분석 = 97
2. 구성당 분석 = 97
3. 항응고 활성 측정 = 98
4. 해조류로부터 항응고 활성 검색 = 98
5. 참도박(Pachymeniopsis elliptica)으로부터 항응고 물질의 추출조건 검토 = 98
가. 추출용매에 따른 항응고 활성 검토 = 98
나. 추출온도에 따른 항응고 활성 검토 = 98
다. 추출시간에 따른 항응고 활성 검토 = 100
6. 참도박으로부터 항응고 활성 물질의 추출 = 100
7. 참도박 열수 추출물로부터 항응고 활성 물질의 정제 = 100
가. 한외여과에 의한 분획 = 100
나. DEAE-Toyopearl 650C에 의한 ion exchange chromatography = 100
다. Sepharose CL-6B에 의한 gEl filtration chromatography = 100
8. 정제다당류의 순도 및 HPLC 분자량 측정 = 102
9. 적외선 흡수분광법(Infra-red spectroscopy) = 103
10. 참도박 열수 추출물의 in vivo 상에서의 항응고 활성 = 103
가. 급성독성(acute toxicity) 검사 = 103
나. 아만성 독성(subchronic toxicity) 실험 = 103
다. Thrombin에 대한 항치사성 효과 = 104
라. 생체 내에서의 항응고 효과 = 104
마. 생체 내에서의 잔존 효과 = 104
11. ACE 저해물질의 추출조건 검토 = 104
가. 산ㆍ알칼리 가수분해 = 104
나. 시간에 따른 산ㆍ알칼리 가수분해 = 105
다. 농도에 따른 산 가수분해 = 105
12. ACE 저해효과 측정 = 105
13. 단백질 정량 = 105
14. 김으로부터의 ACE 활성 저해물질의 분리 = 105
15. ACE 저해물질의 정제 = 106
가. Amberlite XAD 8 column에 의한 affinity chromatography = 106
나. DEAE-Toyopearl 650C column에 의한 ion exchange chromatography = 106
다. Sephadex LH-20 column에 의한 size exclusion chromatography = 106
라. Reverse phase HPLC에 의한 분리 = 106
마. High Performance Capillary Electrophoresis(HPCE) = 106
16. Protease처리에 대한 영향 = 108
17. 활성물질의 특성 = 108
가. 분자량 확인 = 108
나. ACE에 대한 저해 양상 = 108
다. 아미노산 분석 = 108
18. 본태성고혈압쥐에서의 혈압강하효과 = 109
가. 장내 소화효소에 대한 영향 = 109
나. Single oral administration = 110
다. Daily oral administration = 110
19. ACE activities of organs in SHR's = 110
가. Daily oral administration = 110
나. Serum에서의 ACE 추출 = 110
다. 각 조직에서의 ACE 추출 = 110
라. 각 조직에서 추출한 ACE 활성 측정 = 111
20. Hep-G2 cell에서의 항콜레스테롤 효과 = 111
가. Cell cultures = 111
나. Hep-G2 cell에서의 지질 추출 = 112
다. 트리글리세라이드 측정 = 112
라. 콜레스테롤 측정 = 112
21. 김 함유 ACE 활성 저해성분의 공업적 추출방법 = 113
22. 김 함유 ACE 활성 저해물질의 공업적 수준에서의 분리 및 정제 = 113
가. 탈색방법 = 113
나. 한외여과를 이용한 공업적 수준에서의 정제법 확립 = 113
다. 김 함유 ACE 활성 저해물질의 공업적 순도에서의 조제 = 113
23. 경질캡술제 제작 및 안정성 검사 = 113
제3절 결과 = 14
제1항 해조류로부터 항응고 활성물질의 검색 = 114
제2항 참도박(Pachymeniopsis elliptica)으로부터 항응고 활성 물질의 추출 = 117
1. 추출용매에 따른 항응고 활성 검색 = 117
2. 추출온도에 따른 항응고 활성 검색 = 118
3. 추출시간에 따른 항응고 활성 검색 = 119
4. 참도박으로부터 항응고성 물질의 대량추출과 에탄올 농도별 침전 = 120
제3항 참도박(Pachymeniopsis elliptica)으로부터 항응고 활성 물질의 분리 및 정제 = 122
1. PE-2의 ultrafiltration 분획에 의한 항응고 활성 = 122
2. PE-2-IV의 ion exchange chromatography에 의한 분획 = 123
3. PE-2-IVC의 Sepharose CL-6B에 의한 분획 = 124
4. PE-2-IVC-ii의 HPLC에 의한 분획1 = 124
제4항 정제 항응고 활성 다당의 순도 및 분자량 측정 = 129
1. 순도 확인 = 129
2. 정제 다당의 분자량 검토 = 130
3. 참도박으로부터 추출한 항응고성 물질의 특성 = 130
제5항 참도박에서 분리한 항응고성 다당류의 IR 흡수 특성 파악 = 131
제6항 참도박 PE-2의 mouse(in vivo)에서의 항응고 활성 = 133
1. 경구투여 급성 독성(acute toxicity) = 133
2. 꼬리정맥투여 급성 독성 = 133
3. 경구에 의한 아만성 독성(subchronic toxicity) = 134
4. Thrombin에 의한 항치사성 효과 = 135
5. 경구투여에 의한 생체 내에서의 항응고 효과 = 135
6. 꼬리정맥투여에 의한 생체 내에서의 항응고 효과 = 136
7. 생체내에서의 잔존효과 = 137
제7항 해조류로부터 ACE 저해활성 검색 = 138
제8항 산ㆍ알칼리 가수분해물의 ACE 저해활성 = 138
1. 산ㆍ알칼리 가수분해 = 138
2. 산ㆍ알칼리 가수분해에 대한 반응시간의 영향 = 138
3. 산 가수분해에 대한 농도의 영향 = 143
제9항 김 산가수분해물의 ACE 저해활성 = 143
제10항 ACE 활성 저해물질의 분리 및 정제 = 144
1. Amberlite XAD 8 column chromatography에 의한 분리 = 144
2. DEAE-Toyopearl 650C column chromatography에 의한 분리 = 145
3. Sephadex LH-20 column chromatography에 의한 분리 = 147
4. Analytical HPLC에 의한 분리 = 147
5. High Performance Capillary Electrophoresis (HPCE)에 의한 순도확인 = 147
제11항 ACE 활성 저해물질의 특성 = 150
1. 정제물질의 분자량 확인 = 150
2. ACE에 대한 저해 양상 = 150
3. 아미노산 분석 = 152
제12항 본태성 고혈압쥐로부터 혈압강하효과 = 152
1. 소화효소에 대한 영향 = 152
2. Single oral administration = 153
3. Daily oral administration = 154
4. ACE activity of the organs in SHR's = 154
제13항 ACE 저해제의 항콜레스테롤 효과 = 156
1. Cell viability = 156
2. ACE 저해제의 항콜레스테롤 효과 = 157
제14항 김 함유 ACE활성 저해물질의 기능성 식품화 = 158
1. 공업적 추출방법의 확립 = 158
2. 시작품 제작 및 안정성 검사 = 161
부록 = 162-1
1. 발표논문 = 162-1
2. 특허출원 = 182-1
