008110427s2003    bnk        GO    a  korIB
 056  ▼a520.7▼23
 090  ▼a520.7▼b해62ㅁ
 110  ▼a해양수산부
 24500▼a명태가공부산물로부터 기능성 간장의 개발▼d해양수산부▼e부경대학교 [공편]
 260  ▼a[부산]▼b부경대학교▼c2003
 300  ▼ax, ⅷ, 129 p.▼b삽도▼c전자파일
 44000▼a최종연구보고서
 50000▼a연구책임자 : 김세권
 50010▼a원문파일(pdf)로만 열람가능
 50010▼k: 제1세부과제명: 명태가공부산물로부터 생리기능성 소재의 개발
 50010▼K: 제2세부과제명: 명태가공부산물을 이용한 기능성 간장의 개발
 504  ▼a참고문헌 : p.74-82, 128-129
 7001 ▼a김세권
 710  ▼a부경대학교
 740 0▼a명태가공부산물로부터 생리기능성 소재의 개발
 740 0▼a명태가공부산물을 이용한 기능성 간장의 개발
 856  ▼uhttp://library.mafra.go.kr/skyblueimage/eb00662
 9501 ▼a비매품

제1세부과제  명태가공부산물로부터 생리기능성 소재 개발 ····· p. 0
 제1장  서론 ····· p. 1
 제2장  재료 및 방법 ····· p. 7
  1. 재료 ····· p. 7
  2. 고등어 내장으로부터 조효소의 추출 및 활성측정 ····· p. 8
   2.1 고등어내장으로부터 조효소의 추출 ····· p. 8
   2.2 고등어 내장에서 추출한 조효소의 활성 측정 ····· p. 10
    2.2.1 천연기질에 대한 활성 측정 ····· p. 10
    2.2.2 합성기질에 대한 활성 측정 ····· p. 11
     2.2.2.1 Trypsin에 대한 합성기질의 활성 측정 ····· p. 11
     2.2.2.2 α-Chymotrypsin에 대한 합성기질의 활성 측정 ····· p. 12
  3. 명태 frame 단백질에 대한 최적 가수분해조건 검토 ····· p. 12
   3.1 일반성분 분석 ····· p. 13
   3.2 가수분해도 측정 ····· p. 13
   3.3 pH 효과 ····· p. 13
   3.4 온도에 대한 효과 ····· p. 13
   3.5 기질농도에 대한 효과 ····· p. 14
   3.6 기질 대 효소비에 대한 효과 ····· p. 14
   3.7 반응시간에 대한 효과 ····· p. 14
   3.8 명태 frame 단백질 가수분해물의 분자량별 분획 ····· p. 14
  4. 가수분해물에 대한 항신화활성 측정 ····· p. 14
   4.1 Ferric thiocyanate method ····· p. 15
   4.2 Radical scavenging activity (RSA) 측정 ····· p. 15
   4.3 농도에 따른 항산화력 측정 ····· p. 15
   4.4 상승효과 측정 ····· p. 15
   4.5 세포배양계에서의 항산화효과 ····· p. 16
    4.5.1 세포배양 ····· p. 16
    4.5.2 세포정량 ····· p. 16
    4.5.3 항산화활성물질의 세포독성 측정 ····· p. 16
    4.5.4 t-BHP 농도별 세포괴사에 대한 가수분해물의 효과 ····· p. 17
    4.5.5 t-BHP의 세포괴사에 대한 가수분해물의 농도별 효과 ····· p. 17
  5. 항고혈압 활성 측정 ····· p. 17
   5.1 ACE 저해활성을 통한 항고혈압활성 측정 ····· p. 18
   5.2 In vivo에 의한 혈압강하활성 측정 ····· p. 19
   5.3 ACE에 대한 저해 패턴의 측정 ····· p. 19
  6. 생리기능성 물질의 분리,정제 및 특성 ····· p. 19
   6.1 이온 크로마토그래피에 의한 분리 ····· p. 19
   6.2 겔여과 크로마토그래피 ····· p. 20
   6.3 HPLC를 이용한 생리활성물질의 최종 분리 및 정제 ····· p. 20
   6.4 생리활성 펩타이드의 구성아미노산 분석 ····· p. 20
   6.5 생리활성 펩타이드의 아미노산 서열분석 ····· p. 21
 제3장  결과 및 고찰 ····· p. 22
  1. 명태 frame의 일반성분 분석 ····· p. 22
  2. 고등어 내장 유래 조효소의 추출 ····· p. 22
   2.1 천연기질에 대한 조효소의 활성 ····· p. 22
   2.2 합성기질에 대한 활성 ····· p. 25
  3. 명태 frame 단백질에 대한 최적 가수분해 조건 검토 ····· p. 27
   3.1 가수분해에 대한 pH의 효과 ····· p. 27
   3.2 가수분해에 대한 온도 효과 ····· p. 27
   3.3 기질농도에 따른 가수분해 효과 ····· p. 30
   3.4 기질 대 효소비에 따른 가수분해 효과 ····· p. 30
   3.5 가수분해에 대한 반응시간의 효과 ····· p. 33
  4. 명태 frame 단백질 가수분해물에 대한 생리활성 검토 ····· p. 35
   4.1 MICE에 의한 명태 frame 가수분해물의 항산화 활성 ····· p. 35
   4.2 Radical scavenging activity (RSA) 측정 ····· p. 35
   4.3 농도에 따른 항산화 활성 측정 ····· p. 37
   4.4 가수분해물의 상승효과 ····· p. 41
  5. 명태 frame 가수분해물로부터 항산화활성 펩타이드의 분리 및 정제 ····· p. 43
   5.1 항산화활성 펩타이드의 분리 및 정제 ····· p. 43
    5.1.1 이온 크로마토그래피 ····· p. 44
    5.1.2 겔 크로마토그래피 ····· p. 44
    5.1.3 HPLC에 의한 분리 ····· p. 44
    5.1.4 항산화 펩타이드의 아미노산 조성 및 구조분석 ····· p. 47
   5.2 세포 배양계에서 명태 frame 가수분해물의 항산화활성 검토 ····· p. 50
    5.2.1 배양 정상간세포에 대한 항산화활성 펩타이드의 세포독성 ····· p. 50
    5.2.2 t-BHP 농도별 세포괴사에 대한 가수분해물의 항산화작용 ····· p. 50
    5.2.3 t-BHP로 유발된 세포괴사에 대한 가수분해물의 농도에 대한 항산화 효과 ····· p. 53
  6. 명태 frame 가수분해물로부터 항고혈압 펩타이드의 분리 및 정제 ····· p. 55
   6.1 이온 크로마토그래피 ····· p. 55
   6.2 겔 크로마토그래피 ····· p. 57
   6.3 HPLC에 의한 분리 ····· p. 57
   6.4 ACE 저해 펩타이드의 저해 메카니즘 결정 ····· p. 57
   6.5 ACE 저해 펩타이드이 아미노산 서열 결정 ····· p. 66
   6.6 ACE 저해활성 펩타이드의 in vivo에서 혈압강하 활성측정 ····· p. 68
 제4장  요약 ····· p. 71
 제5장  참고문헌 ····· p. 74

제2 세부과제  명태가공부산물을 이용한 기능성 간장의 개발 ····· p. 82-1
 제1장  서론 ····· p. 83
 제2장  재료 및 방법 ····· p. 86
  1. 재료 ····· p. 86
  2. 굴을 이용한 발효조미액의 제조 ····· p. 87
  3. 굴 발효조미액의 성분분석 ····· p. 87
   3.1 일반성분 분석 ····· p. 87
   3.2 구성아미노산 분석 ····· p. 87
   3.3 유리아미노산 분석 ····· p. 87
   3.4 핵산관련물질 분석 ····· p. 88
  4. 굴 발효조미액 성분의 생리활성 검토 ····· p. 88
   4.1 굴 발효조미액의 항고혈압활성 ····· p. 88
    4.1.1 ACE 저해활성을 통한 항고혈압활성 측정 ····· p. 88
    4.1.2 In vivo에 의한 혈압강하활성 측정 ····· p. 89
    4.1.3 ACE에 대한 저해 패턴의 측정 ····· p. 89
   4.2 항암활성 측정 ····· p. 89
    4.2.1 세포배양 ····· p. 89
    4.2.2 세포정량 ····· p. 90
    4.2.3 세포증식능 측정에 의한 항암활성 측정 ····· p. 90
   4.3 Apoptosis 유도활성 ····· p. 90
    4.3.1 형태학적 분석 ····· p. 90
    4.3.2 DNA 분절화 분석 (DNA fragmentation analysis) ····· p. 91
    4.3.3 Flow cytometery에 의한 세포주기 분석 ····· p. 91
  5. 굴 발효조미액으로부터 생리활성 펩타이드의 분리 및 정제 ····· p. 92
   5.1 이온교환 크로마토그래피 ····· p. 92
   5.2 겔여과 크로마토그래피 ····· p. 92
   5.3 HPLC를 이용한 생리활성물질의 최종 분리 및 정제 ····· p. 92
  6. 명태 frame 단백질 가수분해물과 굴 발효조미액을 이용한 기능성 천연효소분해 간장의 제조 ····· p. 93
  7. 관능평가 ····· p. 93
 제3장  결과 및 고찰 ····· p. 95
  1. 굴을 이용한 발효조미액의 제조 ····· p. 95
   1.1 발효조미액의 제조 ····· p. 95
   1.2 발효조미액의 일반성분 ····· p. 95
   1.3 발효조미액의 구성아미노산 분석 ····· p. 95
   1.4 굴 발효조미액의 유리아미노산 분석 ····· p. 98
   1.5 굴 발효조미액의 핵산관련물질 분석 ····· p. 98
  2. 자가숙성된 굴 발효조미액으로부터 생리활성 팀색 ····· p. 101
  3. 굴 발효조미액으로부터 항고혈압 물질의 분리 및 정제 ····· p. 101
   3.1 이온 크로마토그래피에 의한 ACE저해 펩타이드의 분리ㆍ정제 ····· p. 101
   3.2 겔 크로마토그래피를 이요한 ACE저해 펩타이드의 분리ㆍ정제 ····· p. 104
   3.3 고성능 액체크로마토그래피에 의한 분리 ····· p. 104
   3.4 ACE 저해 펩타이드의 저해 메카니즘 결정 ····· p. 112
   3.5 ACE 저해활성 펩타이드의 in vivo에서 혈압강하 활성측정 ····· p. 112
  4. 굴 발효조미액의 항암활성 ····· p. 112
   4.1 배양 정상간세포에 대한 발효조미액의 세포독성 ····· p. 115
   4.2 굴 발효조미액의 항암활성 ····· p. 115
   4.3 굴 발효조미액의 apoptosis 유도활성 ····· p. 118
  5. 명태 frame 단백질 가수분해물과 굴 발효조미액을 이용한 기능성 천연 효소분해 간장의 제조 ····· p. 121
 제4장  요약 ····· p. 125
 제5장  참고문헌 ····· p. 128