목차정보
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서명 : 포유자돈의 설사병 예방을 위한 항원 발현 유산균 개발 제1장 연구개발과제의 개요 = 12 제1절 연구개발의 목적 및 범위 = 12 제2절 연구개발의 필요성 = 12 제2장 국내외 기술개발 현황 = 14 제1절 생균제용 Lactobacillus의 분리 = 14 제2절 항원발현 유산균 개발 = 16 제3장 연구개발수행 내용 및 결과 = 19 제1절 이론적, 실험적 접근방법 = 19 1. 자돈의 분변에서 Lactobacillus의 분리와 특성조사 = 19 가. 분리균주의 선별 = 19 나. 1차 선발 균주의 특성 = 20 다. 최종 선발 균주의 특성 = 23 1) 분리 균주의 동정 = 23 2) 생균제 특성조사 = 23 가) 산성 pH에서 생장 = 23 나) 담즙산에서의 생장 = 23 다) 병원성 미생물에 대한 항균활성 = 23 라) 부착성과 부착 억제성 = 24 라. L. reuteri 6-4의 사양실험 = 27 2. 항원발현 유산균 개발 = 29 가. 세포응집단백질 영역의 최소화 = 29 나. Lactobacillus 유래 플라스미드의 염기서열결정 = 29 다. Cloning, transformation 및 DNA manipulation = 29 라. β-lactamase(Bla) gene fusion = 30 마. FaeG 발현벡터의 작성 = 30 제2절 연구결과 = 32 1. 자돈의 분변에서 Lactobacillus 균주의 분리와 특성조사 = 32 가. Lactobacillus의 분리 = 32 나. 일차 선발된 Lactobacillus균주의 성질 = 34 다. 최종선발 균주의 동정과 생균제 특성 = 45 1) 선발된 균주의 산 및 담즙산 내성 = 45 2) 최종선발 균주의 동정 = 48 가) API 50 CHL kit에 의한 동정 = 48 나) 16S-23S rRNA ISR-PCR에 의한 동정 = 48 3) 최종 선발 균주의 생균제 특성 = 54 가) 산성 pH와 담즙산에서의 생장 = 54 나) Bile salt hydrolase(BSH)의 활성 = 60 다) 병원성 미생물에 대한 항균활성 = 62 라) Caco-2 세포에 대한 부착성 = 66 마) Caco-2 세포에 대한 부착 억제성 = 70 4) L. reuteri 6-4의 사양실험 = 75 가) 증체량, 사료섭취량 및 사료요구율 = 75 나) 분내 미생물의 변화 = 75 2. 항원 발현 유산균 개발 = 77 가. Lactobacillus 유래 플라스미드의 염기서열분석 = 77 나. 세포응집단백질유전자(cluA)영역의 최소화 = 77 다. Northern blot에 의한 전사체 분석 = 79 라. FaeG 항원발현벡터의 구축 = 81 제4장 목표달성도 및 관련분야에의 기여도 = 85 제1절 자돈의 분변에서 Lactobacillus 균주의 분리와 특성조사 = 85 제2절 항원 발현 유산균 개발 = 86 제5장 연구개발결과의 활용계획 = 87 제1절 추가연구의 필요성 = 87 제2절 타연구에의 응용 = 87 제6장 연구개발과정에서 수집한 해외과학기술정보 = 88 제7장 참고문헌 = 90 |
